当前位置: 首页 » 动物营养 » 正文

氧化鱼油对鲤鱼(Cyprinus carpio)肉质的影响

  作者: 来源: 日期:2004-12-01  

 

 

 

摘要:  本试验在实用饲料中添加2%的新鲜鱼油、其过氧化物值(POV1.28 meq O2/kgPOV (meq O2/kg)分别为118.79189.37367.86的氧化鱼油,并在新鲜鱼油和POV118.79meq O2/kg的氧化鱼油饲料中分别添加维生素E 100mg/kg,形成6个处理饲料,投喂50±3克一龄鲤鱼鱼种两个月,结果表明:1  氧化鱼油消耗鲤鱼肌肉中维生素EP<0.05),消耗程度与鱼油氧化程度成正比关系。随着储存(-20℃)时间延长,维生素E含量明显下降(P<0.05);2  新鲜鱼油和POV 118.79meq O2/kg的氧化鱼油对鲤鱼肌肉储存(-20℃)期间氧化稳定性的破坏作用强于POV meq O2/kg)为189.37367.86氧化程度较高的鱼油,但新鲜鱼油的破坏作用低于POV118.79 meq O2/kg的低氧化程度鱼油。肌肉氧化稳定性在储存初期较差,15d时增强,之后随时间延长而下降;3  氧化鱼油对肌肉挥发性盐基氮(VBN)无显著影响(P>0.05),而储存(-20℃)时间对肌肉VBN有显著影响(P<0.05);4  氧化鱼油显著增加肌肉渗出性损失(P<0.05),但随着鱼油氧化程度升高,增加态势相对减弱(P>0.05)。随着解冻时间延长肌肉渗出性损失增加(P<0.05);5 饲料中添加维生素E相应提高肌肉中维生素E水平(P<0.05)、减弱氧化鱼油对肌肉氧化稳定性的破坏(P<0.05)、减少肌肉VBN生成(P<0.05)和降低氧化鱼油诱发的肌肉渗出性损失(P>0.05)。

关键词:  鲤鱼; 肉质; 氧化鱼油; 维生素E

 

    氧化油脂对肉产品的影响,主要表现为降低维生素E含量[1,2],破坏肌肉氧化稳定性[3,4] ,使肉产品在储存期间发生肌肉渗出性损失[57] 、产生异味[8]和颜色消退[9]及有害的过氧化物形成[10]。在猪[11]、肉鸡[2,3,12,13]、非洲鲶Clarias gariepinus[7]、狼鲈(Dicentrarchus labrax)[1]和大西洋鲑(Salmo salar)[14]等动物上已有详尽的报道,而对于鲤鱼尚未有类似的研究,本研究旨在对这一问题进行探讨。

 

1  材料与方法

 

1.1  试验动物及分组

    50±3克一龄鲤鱼鱼种。随机分为6个处理,每处理设4个重复,共24个试验单元,每单元投放鱼种12尾。

1.2  氧化鱼油制作

试验用油为鳀鱼油,取自山东寿光羊口鱼油精炼厂。鱼油取回后放置于10℃ 2个月,-20℃冷冻箱中储藏4个月,然后制作氧化鱼油。制作过程如下:在鱼油中添加Fe2+ 30 mg/kg、Cu2+ 15 mg/kg、H2O2 600 mg/kg和0.3%的水,充分混合后,于37±1℃条件下搅拌氧化,在45h、55h、70h取样得到过氧化物值(POV)(meq O2/kg)分别为118.79、189.37和367.86的氧化鱼油,依次简写为PX1、PX2和PX3,以F表示新鲜鱼油。氧化鱼油氧化指标测定值见表1。

1.3  试验饲料

在基础饲料中添加2%新鲜鱼油(POV1.28 meq O2/kg)和POV meq O2/kg)分别为118.79189.37367.86的氧化鱼油,组成F(对照组)、PX1PX2PX3四个处理,在FPX1处理分别添加100mg/kg的维生素E,形成F-TPX1-T处理。饲料组成见表2。饲料用小型制粒机制粒,自然晒干,于温度-20℃条件下储存,投喂期间,每周取料一次,取出饲料置于常温下,直至投喂完。

 

                  1  氧化鱼油氧化指标

          Tab.1  Oxidative indices of oxidized fish oil

处理

Treatments

过氧化物值

POV (meq O2/kg)

硫代巴比妥酸反应物 TBARS( mg MDA /kg)

酸价

AV(mg KOH/g)

碘价

IV g I/100g)

F

1.28±0.01

15.52±6.85

1.18±0.02

157.48±0.44

PX1

118.79±0.12

1282.55±165.24

1.65±0.02

151.35±1.11

PX2

189.37±0.66

2066.14±88.58

2.75±0.02

144.69±0.94

PX3

367.86±1.22

2439.49±150.13

4.46±0.07

128.36±1.57

注: meq毫克当量Milligram equivalent MDA丙二醛Malondialdehyde.

 

                            2  试验饲料组成

                      Tab.2  Compositions of test feed

 

F

PX1

PX2

PX3

F-T

PX1-T

1.28

118.79

189.37

367.86

1.28

118.79c

鱼粉Fish meal(%)

20.00

20.00

20.00

20.00

20.00

20.00

豆粕Soybean meal(%)

35.00

35.00

35.00

35.00

35.00

35.00

棉粕Cottonseed meal(%)

15.00

15.00

15.00

15.00

15.00

15.00

面粉Wheat flour(%)

24.70

24.70

24.70

24.70

24.70

24.70

磷酸二氢钙Ca(H2PO4)2(%)

2.00

2.00

2.00

2.00

2.00

2.00

矿物盐预混料Mineral premix(%) a

1.00

1.00

1.00

1.00

1.00

1.00

维生素预混料Vitamin premix(%) b

0.20

0.20

0.20

0.20

0.20

0.20

氯化胆碱Choline chloride(%)

0.10

0.10

0.10

0.10

0.10

0.10

鱼油Fish oil(%)

2.00

2.00

2.00

2.00

2.00

2.00

维生素E Vitamin E(mg/kg)

0.00

0.00

0.00

0.00

100.00

100.00

注: a  矿物元素添加量(mg/kgThe supplemented mineral elements(mg/kg) : Mg  216.00, Mn  15.36, Zn   31.28,  Cu   3.00, Fe  160.00,  Se  0.15, Co  1.00,  I   1.00.

b  维生素添加量(mg/kgThe supplemented vitamins(mg/kg):VA 10000.00IU,  VD  4000.00IU,  VE   25.00,  B1  1.00,  B2  14.00, B6   6.00, 泛酸钙(Pantothenic acid)   50.00,  烟酸(Nicotinamide)  30.00,  生物素(Biotin)  1.00,  B12   1.00,  Vc   300.00.

c  鱼油(Fish oil) POVmeq O2/kg.

 

1.4  饲养管理

    采用循环水养殖系统,养殖用聚乙烯桶有效容积100L。试验期间每日投喂两次,即800时和1500时各投喂一次。日投喂量按鱼体重2%计。每周清洗养殖设施一次。试验期间用加热板将水温控制在26℃左右,溶氧5-6mg/L,氨氮0.1-0.2mg/L,Ph 8.1-8.3,养殖试验从199871日开始至199891日结束,共60d

1.5  测定指标与方法

1.5.1  肌肉维生素 E含量[15]

1.5.2  肌肉硫代巴比妥酸反应物(Thiobarbituric acid-reacting substancesTBARS:依据向荣等[16]的方法,并作一些改进。具体步骤为:

 

 

 

                  20%肌肉匀浆0.4 ml

                        8.1%十二烷基硫酸钠(SDS0.2ml

                        20%醋酸缓冲液(PH3.5)1.5ml

                        ↓1%硫代巴比妥酸(TBA)1.5ml

                        ↓蒸馏水1ml

                  80-95℃水浴60分钟

                        ↓冷却,1500×g离心15分钟

                取上清液在532nm处测光密度(OD)值

标准管处理同上,用10nmol/L四乙氧基丙烷(TEP)0.4ml代样品。

1.5.3  肌肉挥发性盐基氮(VBN)和鱼油酸价(Acid  value AV[17]

1.5.4  肌肉渗出性损失:将收获鱼擦净体表水分后,于-20℃冷冻24h,然后取出于常温(30℃左右)下解冻,在完全解冻后024824h,分别用纱布擦净体表渗出液,计算水分渗出性损失。公式如下:

   

                          解冻前鱼重-解冻后鱼重

   肌肉渗出性损失(%=                         ×100

                               解冻前鱼重                     

 

   进行维生素ETBARSVBN测定时,将每重复平均来自4尾鱼的背部肌肉搅碎混匀后取样检测。肌肉渗出性损失每个重复用5尾鱼。测定前鲤鱼保存在-20℃的冰橱中。

1.5.5  鱼油碘价(Iodine value IV)、硫代巴比妥酸反应物(TBARS)和过氧化物值(Peroxide Value POV [18]

1.6  数据处理

SAS软件包进行单因素方差分析和2×2二因素分析,多重比较用LSD法。

 

2  结果与讨论

 

2.1  氧化鱼油对肌肉储存期间维生素E含量的影响

3 表明,在冷冻(-20℃)0d75d时,PX1PX2PX3处理肌肉维生素E含量较对照组显著下降(P<0.05),下降趋势与鱼油氧化程度成正比关系。在0d,最高氧化处理PX3较对照组下降60.82%。各处理维生素E随储存时间延长显著下降(P<0.05)PX3处理在75d时已低于检出限。饲料中添加100mg/kg的维生素E后,不论在0d75dF-T处理肌肉中维生素E高于PX1-T处理(P<0.05)F-TPX1-T处理肌肉中维生素E分别高于FPX1处理(P<0.05)。本结果指出氧化鱼油消耗鲤鱼肌肉中维生素E,其消耗程度与鱼油氧化程度成正比关系;肌肉在储存过程中,维生素E含量减少;在饲料中添加维生素E可相应提高肌肉中维生素E水平。

氧化油脂对体组织中维生素E含量的影响已有大量报道,大鼠[19]、肉鸡[2,12,13,20]、狼鲈[1]和非洲鲶[7]的研究一致表明,氧化油脂破坏组织维生素E,其破坏程度与油脂氧化程度成正比关系[21],本研究结果也证实了这一结论。饲料中维生素E水平对组织中维生素E含量有重要影响,饲料中添加维生素E相应提高肌肉中维生素E含量[1,12],本试验也发现了这一规律。

 

   

          3  氧化鱼油对肌肉储存期间维生素E含量的影响            单位:ug/g

   Tab. 3  Effects of oxidized fish oil on the muscular vitamin E during  storages  Unit:ug/g                            

储存时间

Storage time

F(1.28)

PX1(118.79)

PX2(189.37)

PX3(367.86)

F-T(1.28)

 

PX1-T(118.79)

0d

2.45±0.34Aa(c)*

1.63±0.05Ab(c)

1.45±0.33Ac

0.96±0.19 d

11.77±1.32A(a)

9.25±0.81A(b)

75d

0.55±0.17Ba(c)

0.31±0.17Bb(c)

0.27±0.05Bc

------------

2.91±0.46B(a)

1.77±0.24B(b)

注:括号外小写字母指明行数据FPX1PX2PX3四处理差异比较情况,括号内小写字母指明行数据FPX1F-TPX1-T四处理差异比较情况,大写字母指明列数据差异比较情况,数据间没有相同字母者表示差异显著(P<0.05),下表同。The small letters inside and outside brackets show differences between values of FPX1PX2 and PX3 treatments and that of FPX1F-T and PX1-T treatments on the lines respectively, the capital letters point out differences among  values of the columns. Values with no same  letters mean significant differences(P<0.05),same as the following tables.

    低于检测限 Under the detectable level.

   括号内值表示过氧化物值(meq O2/kg,下表同。 Values in brackets indicate peroxide value(POV) ( meq O2/kg ),same as the following tables.

   *X

 

 

2.2  氧化鱼油对肌肉储存期间TBARS值的影响

4显示,PX1PX2PX3处理和对照组肌肉在-20℃条件下的四个储存时间段即0d15d45d75d,以PX1处理TBARS值最高,其后依次为FPX2PX3处理。上述四处理的TBARS45d内随储存时间具有一致的变化趋势,即在0d时较高,15d时显著下降(P<0.05),45d时较大幅度回升(P<0.05)75d时,TBARS变化发生差异,除PX1处理较45d明显升高外(P<0.05),其余各处理差异不大, PX2PX3处理甚至表现出下降态势(P>0.05)。值得注意的是各处理经过75d储存后,肌肉TBARS值较0d并未发生显著变化,仅F处理和PX1处理略有增加,而PX2PX3 处理却稍有下降(P>0.05)

   

          4  氧化鱼油对肌肉储存期间TBARS值的影响               单位:ug MDA/g

  Tab.4  Effects of oxidized fish oil on the muscular TBARS during  storages   Unit:ugMDA/g                                                                                                        

储存时间Storage time

F(1.28)

PX1(118.79)

PX2(189.37)

PX3(367.86)

F-T(1.28)

 

PX1-T(118.79)

0d

25.67±3.87Aab(a)

30.91±4.96Aa(a)

24.78±1.55Aab

22.86±1.53Ab

24.79±2.09A(a)

24.75±7.30AB(a)

15d

15.73±5.10Ba(a)

15.89±2.74Ca(a)

12.49±5.32Ba

9.56±1.40Ba

12.92±5.01B(a)

10.97±1.55C(a)

45d

24.35±0.94Aa(b)

24.66±1.99Ba(a)

23.01±0.64Aab

20.14±2.70Ab

23.65±3.38A(c)

20.30±0.48B(d)

75d

26.09±4.50Aa(ab)

31.17±1.71Aa(a)

22.54±7.09Aa

19.80±8.54Aa

23.62±7.36A(b)

30.21±1.96A(ab)

 

F-TPX1-T处理与FPX1处理比较发现,各个时间段下,F-TPX1-T处理的TBARS皆分别低于FPX1处理,45d时,F-TPX1-T处理分别与FPX1处理出现显著差异(P<0.05,按二因素统计分析显示,添加100mg/kg的维生素ETBARS具有显著降低作用(P<0.05)F-TPX1-T处理TBARS随时间变化趋势与FPX1基本一致。

 

上述分析表明,新鲜鱼油和POV118.79meq O2/kg的氧化鱼油对鲤鱼肌肉储存期间氧化稳定性的破坏作用强于POV meq O2/kg)为189.37367.86的较高氧化程度鱼油,但新鲜鱼油的破坏作用弱于POV118.79meq O2/kg的低氧化程度鱼油;肌肉冷藏储存过程中,初期氧化稳定性较差,15d时增强,之后随时间延长氧化稳定性下降;饲料中维生素E添加减弱氧化鱼油对肌肉储存期间氧化稳定性的破坏。

由于氧化油脂消耗体组织中维生素E含量,因而减弱了组织氧化稳定性[2,13]。本试验亦证实氧化鱼油消耗肌肉组织中的维生素E,消耗程度决定于鱼油氧化程度,并在低氧化程度鱼油(POV 118.79meq O2/kg)观察到了氧化鱼油对肌肉氧化稳定性的破坏作用,特别之处是发现较高氧化程度鱼油(POV 189.37367.86 meq O2/kg)对肌肉氧化稳定性的破坏尚不如低氧化程度鱼油(POV 118.79meq O2/kg)和新鲜鱼油,这与本试验发现的肌肉组织中维生素E含量随鱼油氧化程度上升而下降的结论相矛盾。发生这种矛盾,鱼油中氧化产物降解可能是一个关键的影响因素。测定发现,鱼油在-20℃条件下储存3个月后,低氧化程度鱼油POV上升,较高氧化程度鱼油POV下降且氧化程度越高下降幅度愈大,此表明低氧化程度鱼油正处于氧化扩殖期而较高氧化程度鱼油已处于氧化产物降解期。有理由认为,鱼油加入饲料后,饲料加工和储存过程中这种变化可能更为剧烈,变化结果造成低氧化程度鱼油中氧化产物含量增加而较高氧化程度鱼油中氧化产物含量相对减少,因而较高氧化程度鱼油表现出对肌肉氧化稳定性的破坏作用减弱,而低氧化程度鱼油反而增强。可以推测,氧化产物的降解产物对肌肉氧化稳定性的破坏作用减弱或消失,但仍具有较强的与维生素E的反应活性,因而出现在较高氧化程度下肌肉维生素E水平大幅度下降而肌肉氧化稳定性却相对增强这一矛盾现象。新鲜鱼油POV已达1.28meq O2/kg,处于氧化启动阶段,在饲料加工和储存中可能进入氧化扩殖期,达成接近于低氧化程度鱼油的效果。必须指出的是,作者仅测定了氧化鱼油储存过程中氧化产物含量的变化规律,并未对氧化鱼油加入饲料后在饲料加工和储存过程中其氧化产物的变化规律进行测定,所以作者对试验结果的分析颇显依据不足,真实状况是否如此尚不明了,可能还有其他机制在发挥作用,故有必要深入研究。

    Lin[12]指出,肉鸡摄食氧化向日葵油后,TBARS在肌肉储存(-20)过程中,随时间延长而增加。而Galvin[2]同样采用氧化向日葵油却发现鸡腿肉在-20℃下储存2个月后TBARS下降的事实。本试验在相同储存条件下也得出了15d时肌肉TBARS下降的结论。出现互为矛盾的结果,主要有两个方面的原因,一方面,储存早期油脂降解产物与肌肉蛋白发生反应[22]或者肌肉组织酶对氧化产物进行分解,造成TBARS下降;另一方面,本试验条件下,可能摄入的氧化产物超过了机体代谢能力,造成组织氧化产物大量积累,在养殖试验结束时其在肌肉组织中的积累已达到了较高水平,导致0dTBARS值较高。当然,这种结论的差异不排除测定误差的可能性。

    饲料添加维生素E后相应提高组织中维生素E水平因而减弱氧化油脂对组织氧化稳定性的破坏已被大量研究所证实[2,3,12,13],本研究也发现了这一规律。

2.3  氧化鱼油对肌肉储存期间挥发性盐基氮(VBN)的影响

    VBN测定显示(5),在各个时间段下,FPX1PX2PX3处理间无显著差异(P>0.05),表明氧化鱼油对肌肉VBN无显著影响。随着时间延长,肌肉VBN升高,在75dPX1PX2PX3处理VBN显著增加(P<0.05),表明储存时间对肌肉VBN有显著影响。各时间段下F-TPX1-T处理肌肉VBN分别低于FPX1处理,说明维生素E降低肌肉VBN产生,在0d时,维生素E对肌肉VBN降低作用达到显著水平(P<0.05)。F-TPX1-T处理肌肉VBN随储存时间的变化趋势同FPX1处理。

 

         5  氧化鱼油对肌肉储存期间挥发性盐基氮(VBN)的影响     单位:mg/100g

          Tab. 5  Effects of oxidized fish oil on the muscular volatile basic nitrogen (VBN) during storages   Unit : mg/100g

储存时间

storage time

F(1.28)

PX1(118.79)

PX2(189.37)

PX3(367.86)

F-T(1.28)

PX1-T(118.79)

0d

12.62±1.01Aa(a)

11.90±0.39Ba(b)

12.39±0.55Ba

11.43±1.33Ba

10.99±0.39B(c)

11.74±0.86A(b)

15d

13.66±2.43Aa(a)

12.35±0.17ABa(a)

12.73±1.64Ba

12.54±0.30ABa

12.57±0.50AB(a)

12.15±0.88A(a)

45d

12.07±2.21Aa(a)

10.09±0.66Ca(a)

11.34±1.18Ba

11.02±0.90Ba

11.07±1.23B(a)

10.95±1.82A(a)

75d

15.23±1.87Aa(a)

13.18±0.64Aa(b)

14.92±0.58Aa

14.19±1.10Aa

13.97±1.27A(ab)

12.93±0.92A(b)

   

    VBN是动物食品由于酶和细菌的作用,蛋白质分解而产生的氮以及胺类等碱性含氮物质,是评判动物食品新鲜度的重要指标。已有的研究中,尚未探讨氧化油脂对VBN的影响,本试验条件下,除储存时间和维生素E影响VBN外,氧化鱼油并未对其发生明显作用。

 

 

2.4  氧化鱼油对肌肉渗出性损失的影响

6、图4指出,在024h,氧化处理PX1PX2PX3肌肉渗出性损失高于F,且PX1PX2处理与F差异显著(P<0.05),PX1PX2处理接近(P>0.05),而PX3处理略低于PX1PX2处理(P>0.05)。在824hFPX1PX2PX3四处理间无显著差异(P>0.05)。此结果表明常温下(30)解冻4h以内,氧化鱼油显著增加肌肉渗出性损失,随着鱼油氧化程度升高,肌肉渗出性损失的增加有相对减弱的态势(P>0.05)。数据亦显示,各处理随解冻时间的延长,肌肉渗出性损失显著增加(P<0.05)。PX1处理添加100mg/kg维生素E后,各时间段下PX1-T处理肌肉渗出性损失低于PX1P>0.05),表明维生素E降低氧化鱼油诱发的肌肉渗出性损失,但其作用未达到显著水平(P>0.05)。有趣的是在对照组F处理添加等量的维生素E后,F-T处理肌肉渗出性损失在0248h反而高于F处理,且在4h差异显著(P<0.05)。F-TPX1-T处理肌肉渗出性损失随时间变化模式同FPX1处理。

 

         

6  氧化鱼油对肌肉渗出性损失的影响                 单位:%

  Tab.6  Effects of oxidized fish oil on the muscular exudative  losses       Unit: %

储存时间 Storage time

F(1.28)

PX1(118.79)

PX2(189.37)

PX3(367.86)

F-T(1.28)

PX1-T(118.79)

0hr

4.03±0.23Eb(b)

4.76±0.61Da(a)

4.73±0.56Da

4.56±0.28Eab

4.37±0.36E(ab)

4.30±0.34D(ab)

2hr

5.51±0.33Db(b)

6.19±0.52CDa(a)

6.20±0.60Ca

5.95±0.22Dab

5.87±0.37D(ab)

5.75±0.19C(ab)

4hr

6.58±0.38Cb(c)

7.22±0.55BCa(a)

7.26±0.59BCa

7.04±0.33Cab

7.01±0.24C(ab)

6.74±0.18C(bc)

8hr

7.94±0.46Ba(a)

8.50±0.69Ba(a)

8.50±0.70Ba

8.23±0.48Ba

8.26±0.34B(a)

7.96±0.27B(a)

24hr

14.38±1.01Aa(a)

14.37±1.84Aa(a)

14.00±1.51Aa

13.86±1.35Aa

14.03±1.10A(a)

13.11±1.43A(a)

注:hr指小时hour.

 

 普遍认为,氧化油脂破坏组织中维生素E,降低生物膜中PUFAs水平,因而削弱了生物膜氧化稳定性[3]并降低了生物膜流动性,特别是油脂氧化产物及其降解产物与膜蛋白发生反应[23,24]导致膜结构完整性的破坏,使来源于摄食氧化油脂的肉产品在储存期间和解冻过程中发生肌肉渗出性损失[57],本研究也证实了这一规律,但未发现渗出性损失与氧化程度的相关性,甚至出现POV367.86 meq O2/kg的高氧化程度鱼油处理肌肉渗出性损失低于较低氧化程度鱼油的态势(P>0.05),这可能与高氧化程度鱼油在饲料加工和储存过程中发生降解且降解产物的毒副作用减弱有关。解冻时间超过4h后,各处理间差异不复存在,说明此时细菌和酶对细胞的破坏作用已掩盖了氧化鱼油所发挥的效果。Baker[7]指出维生素E显著减少非洲鲶肌肉渗出性损失,本研究在POV118.79meq O2/kg的低氧化程度鱼油中添加维生素E后观察到了这一现象(P>0.05),但在对照组却发生了相反的情形,这是否因试验误差造成还是有其它机制在发生作用尚不明了,有待深入研究。

 

3  结论

 

3.1  氧化鱼油消耗鲤鱼肌肉中维生素EP<0.05),消耗程度与鱼油氧化程度一致。随着储存(-20)时间延长,维生素E含量下降;

3.2  新鲜鱼油(POV  1.28 meq O2/kg)和POV118.79 meq O2/kg的氧化鱼油对鲤鱼肌肉储存(-20)期间氧化稳定性的破坏作用强于POV (meq O2/kg)为189.37367.86的较高氧化程度鱼油。但新鲜鱼油的破坏作用低于POV118.79 meq O2/kg的低氧化程度鱼油。肌肉氧化稳定性在储存初期较差,15d时增强,之后随时间延长而下降;

3.3  氧化鱼油对肌肉VBN无显著影响(P>0.05),而储存时间对肌肉VBN有显著影响(P<0.05);

3.4  氧化鱼油显著增加肌肉渗出性损失(P<0.05),但随着氧化程度升高,增加态势相对减弱(P>0.05)。随着解冻时间延长,肌肉渗出性损失增加(P<0.05);

3.5  饲料中添加维生素E相应提高肌肉中维生素E水平(P<0.05),减弱氧化鱼油对肌肉氧化稳定性的破坏(P<0.05)、减少肌肉VBN生成(P<0.05)和降低氧化鱼油诱发的肌肉渗出性损失(P>0.05)。

 

[1] Stephan  G, Messager J L, Lamour  F,et al. Interactions between dietary alpha-tocopherol and oxidized oil on sea bass Dicentrarchus labrax. Fish nutrition in practice[A]: 4th international symposium of fish nutrition and feeding[C]. Biarritz, France, June 24-27, 1991. 1993. 215-218.Les Colloques No.61.

[2] Galvin K,Morrissey P A, Buckley D J. Influence of dietary vitamin E and oxidised sunflower oil on the storage stability of cooked chicken muscle[J].British Poulty Science, 1997, 38:499-504.

[3] Asghar  A, Lin  C  F, Gray  J I,et al. Influence of oxidised dietary oil and antioxidant supplementation on membrane-bound lipid stability in broiler meat[J]. British Poultry Science , 1989,30:815-853.

 [4] Liu  J  F, Huang C F. Tissue alpha-tocopherol retention in male rats is compromised by feeding diets containing oxidized frying oil[J]. Journal of Nutrition, 1995, 125(12): 3071-3080.

 [5] Stanley D W. Biological membrane deterioration and associated quality losses in food tissues[J].Crit Rev Food Sci Nutr, 1991,30:487-553.

 [6] Monahan F J,Asghar A,Gray J I,et al. Effects of oxidized dietary lipid and vitamin E on the colour stability of pork chops[J].Meat Science , 1994,37:205-215.

 [7] Baker R T  M. The effects of dietary alpha-tocopherol and oxidised lipid on post-thaw drip from catfish muscle[J]. Animal Feed Science and Technology, 1997, 65(1-4): 35-43.

 [8] Gray  J I, Pearson  A M. Rancidity and warmed-over flavor[J]. Adv  Meat Res, 1987 ,3:221-269.

 [9] Faustman  C, Cassens  R  G, Schaefer D  M, et al. Improvement of pig meat and lipid stability in Holstein steer beef by dietary supplementation with vitamin E[J]. J  Food Sci, 1989,54:858-862.

 [10] Monahan  F  J, Gray  J  I, Booren  A  M,et al. Influence of dietary treatment on cholesterol oxidation in pork[J]. J Agric Food Chem, 1992,40: 1310-1315.

 [11] Buckley D J,Gray J I,Asghar A,et al. Effects of dietary antioxidants and oxidized oil on membranal lipid stability and pork product quality[J].Journal of Food Science, 1989,54(5):1193-1197.  

 [12] Lin C F,Asghar A,Gray J I,et al. Effects of oxidised dietary oil and autioxidant supplementation on broiler growth and meat stability[J].Br Poult Sci, 1989,30:855-864.

 [13] Sheehy P J A,Morrissey P A, Flynn A. Influence of the heated vegetable oils and α-tocopheryl acetate supplementation on α-tocopherol, fatty acids and lipid peroxidation in chicken muscle[J].British Pourtry Science, 1993, 34:367-381.

 [14] Koshio  S, Ackman R G, Lall  S P. Effects of oxidzed herring and canola oils in diets on growth, survival and flavor of atlantic salmon, Salmo salar[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1994, 42(5): 1164-1169.

 [15] 徐立红,陈专,徐盈,等。用高效液相色谱法测定鱼样中的维生素D3和E[J] .水生生物学报, 1994,18(2):192-193.

 [16] 向荣,王鼎年.过氧化脂质硫代巴比妥酸(TBA)分光光度法的改进[J].生物化学与生物物理进展 , 1990,17(3):241-242.

 [17] 韩雅珊.食品化学实验指导[M].北京:中国农业大学出版社, 1996.47-50,73-75.

 [18] 黄伟坤等.食品检验与分析[M].北京:中国轻工业出版社, 1993 .741-742,416-417,596.

 [19] Izaki  Y, Yoshikawa S,  Uchiyama M. Effect of ingestion of thermally oxidized frying oil on peroxidative criteria in rats[J]. Lipids, 1984,19: 324-331.

 [20] Sheehy  P  J A, Morrissey  P  A, Flynn  A. Consumption of thermally-oxidized sunflower oil by chicks reduces α-tocopherol status and increases susceptibility of tissues to lipid oxidation[J]. Br  J  Nutr, 1994, 71:53-65.

 [21] Hung S S O,Cho C Y, Slinger S J. Measurement of oxidation in fish oil and its effect on vitamin E nutrition of rainbow trout (Salmo gairdneri)[J].Can J Fish Aquat Sci, 1980,37:1248-1253.

 [22] Whang  K,Aberle E D,Judge M D, et al. Antioxidant activity of α-tocopherol in cooked and uncooked ground pork[J].Meat Science, 1986,17:235-249.

 [23] Levin  G, Cogan  U, Levy Y, et al. Riboflavin deficiency and the function and fluidity of rat erythrocyte membranes[J]. J  Nutr, 1990, 120: 857-861.

 [24] Hayam I,Cogan U, Mokady S. Enhanced peroxidation of proteins of the erythrocyte membrane and of muscle tissue by dietary oxidized oil[J]. Biosci  Biotech  Biochem, 1997,61(6): 1011-1012.

 

 

 

 

 
 相关新闻  
管理员信箱:feedchina1@163.com
 

Copyright © 1998-2020 All Rights Reserved 版权所有 《中国饲料》杂志社
Email:feedchina1@163.com